電泳儀是一種利用帶電粒子在電場(chǎng)中移動(dòng)速度不同來分離和分析生物大分子的儀器,以下是其工作原理和一般操作步驟:
生物大分子如蛋白質(zhì)、核酸等在一定的 pH 值條件下會(huì)帶上電荷,在電場(chǎng)的作用下,這些帶電粒子會(huì)向著與其所帶電荷相反的電極移動(dòng)。
不同分子由于其大小、形狀和所帶電荷的不同,在電場(chǎng)中移動(dòng)的速度也不同,從而實(shí)現(xiàn)分離。例如,在蛋白質(zhì)電泳中,SDS - PAGE(十二烷基硫酸鈉 - 聚丙烯酰胺凝膠電泳)可使蛋白質(zhì)亞基按分子量大小分離,分子量小的蛋白質(zhì)在凝膠中移動(dòng)速度快,分子量大的則移動(dòng)慢。在核酸電泳中,DNA 或 RNA 分子在瓊脂糖凝膠中按分子量大小分離,小片段核酸遷移速度快,大片段則遷移慢。
準(zhǔn)備工作
選擇合適的電泳槽和凝膠:根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮蜆悠奉愋?,選擇垂直電泳槽或水平電泳槽,以及相應(yīng)的聚丙烯酰胺凝膠或瓊脂糖凝膠。例如,蛋白質(zhì)電泳常用垂直電泳槽和聚丙烯酰胺凝膠,核酸電泳常用水平電泳槽和瓊脂糖凝膠。
配制緩沖液:根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求,配制合適的電泳緩沖液,如用于核酸電泳的 TAE(Tris - 醋酸 - EDTA)緩沖液或 TBE(Tris - 硼酸 - EDTA)緩沖液,用于蛋白質(zhì)電泳的 Tris - 甘氨酸緩沖液等。
處理樣品:將待分析的生物樣品進(jìn)行適當(dāng)處理,如蛋白質(zhì)樣品可能需要進(jìn)行變性、還原等處理,加入適量的上樣緩沖液,使樣品中的蛋白質(zhì)帶上一定的電荷并具有合適的比重,以便在電泳時(shí)能夠沉入加樣孔。核酸樣品則需加入含指示劑的上樣緩沖液,便于觀察電泳過程。
安裝電泳槽和凝膠
加樣
連接電源并開始電泳
連接電源:將電泳槽的電極與電泳儀的電源輸出端正確連接,注意正負(fù)極不要接反。通常紅色插頭連接正極,黑色插頭連接負(fù)極。
設(shè)置電泳參數(shù):根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求和凝膠類型,設(shè)置合適的電泳電壓、電流和時(shí)間等參數(shù)。例如,瓊脂糖凝膠電泳分離 DNA 片段時(shí),一般采用 5 - 10V/cm 的電壓,電泳時(shí)間根據(jù) DNA 片段大小和凝膠濃度而定,通常為 30 分鐘到數(shù)小時(shí)不等;蛋白質(zhì) SDS - PAGE 電泳一般先以較低電壓(如 80V)進(jìn)行濃縮膠電泳,待樣品進(jìn)入分離膠后,再升高電壓(如 120V)進(jìn)行分離膠電泳,電泳時(shí)間約 1 - 2 小時(shí)。設(shè)置好參數(shù)后,啟動(dòng)電泳儀開始電泳。
觀察和記錄電泳結(jié)果
觀察電泳過程:在電泳過程中,可以通過電泳槽的透明窗口觀察樣品的遷移情況。通??梢钥吹綐悠分械闹甘緞ㄈ玟宸铀{(lán))隨著電場(chǎng)的作用向正極移動(dòng),當(dāng)指示劑移動(dòng)到凝膠的適當(dāng)位置時(shí)(如距離凝膠末端 1 - 2cm 處),即可停止電泳。
記錄結(jié)果:電泳結(jié)束后,關(guān)閉電源,取出凝膠。對(duì)于核酸凝膠,可以使用凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行拍照記錄,在紫外燈下觀察 DNA 或 RNA 條帶的位置和亮度,分析核酸樣品的大小和含量等信息。對(duì)于蛋白質(zhì)凝膠,可以通過考馬斯亮藍(lán)染色、銀染等方法對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行染色,然后觀察蛋白質(zhì)條帶的分布情況,分析蛋白質(zhì)的分子量、純度等。也可以使用專門的圖像分析軟件對(duì)電泳結(jié)果進(jìn)行定量分析。
清潔和整理
清潔電泳槽和電極:使用完畢后,及時(shí)將電泳槽和電極從電泳儀上取下,用去離子水沖洗干凈,去除殘留的緩沖液和凝膠碎片等雜質(zhì)。對(duì)于可重復(fù)使用的電泳槽和電極,要按照說明書進(jìn)行保養(yǎng)和存放,以備下次使用。
整理儀器和試劑:將電泳儀的電源關(guān)閉并拔掉插頭,整理好實(shí)驗(yàn)臺(tái),將剩余的試劑和耗材放回指定位置,保持實(shí)驗(yàn)室的整潔和儀器設(shè)備的良好狀態(tài)。