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電轉(zhuǎn)利器NEPA21,助力綿羊IVF受精卵基因組編輯

來源:廣州市艾貝泰生物科技有限公司   2024年10月29日 15:05  

7月13日,由石河子大學(xué)動物科技學(xué)院皮文輝研究員團(tuán)隊(duì)培育的兩只羊?qū)殞殹皬?qiáng)強(qiáng)”“壯壯”迎來滿月。皮教授團(tuán)隊(duì)使用NEPA21高效基因轉(zhuǎn)染系統(tǒng)(NEPA GENE),通過電穿孔技術(shù)將Cas9 RNPs成分遞送入綿羊體外受精胚胎,成功敲除了肌肉生長抑制素(MSTN)基因,從而獲得了具有更好肌肉品質(zhì)和更高產(chǎn)肉量的基因編輯綿羊。

 

 

此學(xué)術(shù)論文已在國際科學(xué)期刊《International Journal of Molecular Sciences》上發(fā)表,題為“Electroporation Delivery of Cas9 sgRNA Ribonucleoprotein Mediated Genome Editing in Sheep IVF Zygotes”。

 

 

目前,顯微注射和電穿孔是兩種常用于將CRISPR/Cas9傳遞到哺乳動物受精卵中的技術(shù)。雖然顯微注射技術(shù)精確且可重復(fù),但它操作復(fù)雜,每次注射的目標(biāo)有限,成本昂貴并且需要廣泛的技術(shù)培訓(xùn),不適合大規(guī)模應(yīng)用。相比之下,電穿孔技術(shù)作為一種更高效、可擴(kuò)展的基因組編輯方法正逐步流行,它簡化了操作過程,提高了胚胎存活率、轉(zhuǎn)染率和發(fā)育潛力。多種動物模型,包括大鼠、小鼠、牛和豬,已經(jīng)成功地通過電穿孔CRISPR/Cas9系統(tǒng)進(jìn)行了基因修飾。

在本研究中,作者設(shè)計(jì)了五個實(shí)驗(yàn),以羊的ACTG1和MSTN基因?yàn)閷ο?,通過使用NEPA21高效基因電轉(zhuǎn)染系統(tǒng)(NEPA GENE)探索了不同電轉(zhuǎn)染參數(shù)對基因編輯效率的影響。在實(shí)驗(yàn)1中,研究者設(shè)置了三組不同的電穿孔參數(shù)(40V,3.5ms;41V,3.5ms;42V,3ms)來研究它們對綿羊受精卵分裂和囊胚形成率的影響(見表1和圖1)。他們使用sf-Cas9 RNPs靶向綿羊的ACTG1基因位點(diǎn),并評估了在三種不同電穿孔參數(shù)下的基因編輯效率。電穿孔在受精后6小時進(jìn)行,結(jié)果顯示,最佳的電穿孔電壓和脈沖長度組合為40~42V和3.0~3.5ms。此外,更強(qiáng)的電場可能需要配合更短的脈沖持續(xù)時間,以實(shí)現(xiàn)高效基因編輯而不損傷受精卵。

圖1.針對綿羊ACTG1基因的靶向后,分裂和囊胚率(均值±標(biāo)準(zhǔn)差)。不同字母表示顯著差異(p<0.05)。藍(lán)色條表示IVF后的受精卵分裂率。綠色條表示囊胚形成率。

 

在實(shí)驗(yàn)2中,作者探究了三種不同的Cas9 RNPs組分對綿羊電穿孔受精卵突變的影響。作者使用了40V、3.5ms的電穿孔參數(shù),直接電轉(zhuǎn)染與sgRNA預(yù)孵育的sf-Cas9 RNPs,發(fā)現(xiàn)這可以提高基因編輯效率。結(jié)果表明,Cas9 RNPs中sgRNA的高飽和度能顯著提高基因編輯的成功率。研究者比較了三組不同成分RNP轉(zhuǎn)染后囊胚編輯效率:

1、單獨(dú)使用自組裝Cas9 RNPs的組別,突變效率為30.28%±9.14%(見圖2)。

2、使用合成靶向sgRNAs預(yù)孵育的sf-Cas9 RNPs組別(sf-Cas9 RNPs+sgRNA),突變效率顯著更高,達(dá)到87.78% ±10.72%(見圖2)。

3、entirely體外組裝的Cas9 RNPs組別,效率為82.14%±15.57%(見圖2)。

實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在進(jìn)行電穿孔之前,將Cas9蛋白與sgRNA預(yù)先孵育,可以顯著提高綿羊受精卵基因編輯的突變效率。

圖2.三種Cas9 RNPs對綿羊囊胚編輯突變率的影響(ACTG1位點(diǎn))

 

在實(shí)驗(yàn)3中,作者通過電穿孔傳遞Cas9 RNPs至綿羊MSTN基因位點(diǎn),提高了突變效率。使用體外組裝的Cas9 RNPs,并設(shè)置了兩組不同的電穿孔參數(shù):(40V,3.5ms)和(42V,3ms),將Cas9 RNPs轉(zhuǎn)染到綿羊受精卵中。結(jié)果顯示,電穿孔顯著提高了綿羊囊胚中基因組靶標(biāo)的突變率,且這種增加是顯著的(p<0.01,見圖3)。在這兩組電穿孔參數(shù)下,有非常高比例的囊胚表現(xiàn)出突變,突變率分別為84.55%±1.19%和82.83%±0.87%(見圖3)。

這些發(fā)現(xiàn)表明,所測試的兩組電穿孔參數(shù)都適合于IVF綿羊受精卵的基因編輯,能夠有效地提高基因編輯的效率。

圖3.綿羊MSTN基因靶向后的突變率(均值±標(biāo)準(zhǔn)差)

 

在實(shí)驗(yàn)4中,作者探索了Cas9 RNPs和單鏈寡核苷酸(ssODNs)的結(jié)合對綿羊胚胎基因編輯的影響。作者使用了40V、3.5ms的電穿孔參數(shù)來傳遞以下混合物:Cas9蛋白(200ng/µL)、針對MSTN基因位點(diǎn)的sgRNA(300ng/µL)、含有由同源序列flanked的EcoR I和EcoR V位點(diǎn)的ssODNs(420ng/µL),電穿孔后,研究者提取了模板DNA用于聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)擴(kuò)增。然后,他們使用基于PCR產(chǎn)物的測序結(jié)果來分析綿羊囊胚的基因分型。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,小的DNA片段可以通過與Cas9 RNPs的電穿孔有效地插入到綿羊受精卵的目標(biāo)區(qū)域。ssODNs的引入導(dǎo)致囊胚中26%的同源重組率,其中2%的囊胚為純合子。此外,研究還發(fā)現(xiàn)增加ssODNs的長度可以進(jìn)一步提高同源重組的效率。

在實(shí)驗(yàn)5中,研究者將經(jīng)過MSTN基因編輯的囊胚轉(zhuǎn)移到受體母羊中。移植成功并生產(chǎn)了兩只雄性羔羊(見圖4)。其中,羔羊1具有斑點(diǎn)毛色,而羔羊2則是純白色。對這兩只羔羊的MSTN基因進(jìn)行了分析,結(jié)果顯示它們的突變率異常高,分別為94.5%和94.9%。這表明通過電穿孔技術(shù)處理IVF綿羊受精卵進(jìn)行基因編輯是成功的。該結(jié)果進(jìn)一步證實(shí)了CRISPR/Cas9系統(tǒng)在誘導(dǎo)羔羊中遺傳修飾方面的高效性。MSTN基因是肌肉生長的一個關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子,因此該基因的成功編輯可能對提高綿羊的肌肉質(zhì)量和改善其生產(chǎn)性狀具有重要意義。此外,這項(xiàng)研究表明電轉(zhuǎn)染技術(shù)有潛力成為綿羊養(yǎng)殖業(yè)中基因組編輯和育種的有效工具,為未來在畜牧業(yè)中應(yīng)用基因編輯技術(shù)提供了有力的證據(jù)。

 

圖4.出生20天后的基因編輯羔羊

 

NEPA21高效基因轉(zhuǎn)染系統(tǒng)采用全新設(shè)計(jì)的電轉(zhuǎn)程序,配合電壓衰減設(shè)計(jì),在獲得高轉(zhuǎn)染效率的同時,提高細(xì)胞存活率。操作簡單,電轉(zhuǎn)參數(shù)可見可調(diào),適用性強(qiáng)。特別適用于難轉(zhuǎn)染的原代免疫細(xì)胞、干細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞、活體動物、受精卵及宮內(nèi)胚胎等的轉(zhuǎn)染,多篇文獻(xiàn)支持!咨詢可識別下方二維碼。

 

 

參考文獻(xiàn):

1. Pi, W.; Feng, G.; Liu, M.; Nie, C.; Chen, C.; Wang, J.; Wang, L.; Wan, P.; Liu, C.; Liu, Y.; et al. Electroporation Delivery of Cas9 sgRNA Ribonucleoprotein-Mediated Genome Editing in Sheep IVF Zygotes. Int. J. Mol. Sci. 2024, 25, 9145.

2. Kalds, P.; Zhou, S.; Cai, B.; Liu, J.; Wang, Y.; Petersen, B.; Sonstegard, T.; Wang, X.; Chen, Y. Sheep and Goat Genome Engineering:From Random Transgenesis to the CRISPR Era. Front. Genet. 2019, 10, 750.

3. Wang, J.Y.; Doudna, J.A. CRISPR technology: A decade of genome editing is only the beginning. Science 2023, 379.

4. Wang, X.; Niu, Y.; Zhou, J.; Yu, H.; Kou, Q.; Lei, A.; Zhao, X.; Yan, H.; Cai, B.; Shen, Q.; et al. Multiplex gene editing via
CRISPR/Cas9 exhibits desirable muscle hypertrophy without detectable off-target effects in sheep. Sci. Rep. 2016, 6, 32271.

5. Crispo, M.; Mulet, A.P.; Tesson, L.; Barrera, N.; Cuadro, F.; dos Santos-Neto, P.C.; Nguyen, T.H.; Crénéguy, A.; Brusselle, L.Anegón, I.; et al. Efficient Generation of Myostatin Knock-Out Sheep Using CRISPR/Cas9 Technology and Microinjection into Zygotes. PLoS ONE 2015, 10. 


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