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技術(shù)文章

ELISA實(shí)驗(yàn)各種檢測方法及條件選擇指南

閱讀:346          發(fā)布時(shí)間:2024-10-14

     ELISA可用于測定抗原,也可用于測定抗體。這種測定方法中有3種必要的試劑:1.固相的抗原或抗體;2.酶標(biāo)記的抗原或抗體;3.酶作用的底物。

根據(jù)試劑的來源和標(biāo)本的性狀及檢測的具備條件,可設(shè)計(jì)出各種不同類型的檢測方法。

1.雙抗體夾心法測抗原

針對抗原分子上兩個(gè)不同抗原決定簇的單克隆抗體分別作為固相抗體和酶標(biāo)抗體。適用于測定二價(jià)或二價(jià)以上的大分子抗原,不適用于測定半抗原及小分子單價(jià)抗原,因其不能形成兩位點(diǎn)夾心。

2.競爭法測抗原

首先將特異性抗體包被于固相載體表面,經(jīng)洗滌后分成兩組:一組加酶標(biāo)記抗原和被測抗原的混合液,另一組只加酶標(biāo)記抗原,經(jīng)孵育洗滌后加底物顯色,這兩組底物降解量之差,即為所要測定的未知抗原的量。此方法測定的抗原只要有一個(gè)結(jié)合部位即可,對小分子抗原如激素和藥物類的測定常用此法。優(yōu)點(diǎn)是快,缺點(diǎn)是需要較多量的酶標(biāo)記抗原。

3.免疫抑制法測抗原

被檢標(biāo)本對底物顯色的抑制程度與標(biāo)本中所含抗原的量成正比,二者之差即為預(yù)測抗原的量。

4.間接法測抗體

是檢測抗體常用的方法,原理為利用酶標(biāo)記的抗抗體以檢測已與固相結(jié)合的受檢抗體。

本法只要更換不同的固相抗原,可以用一種酶標(biāo)抗體檢測各種與抗原相應(yīng)的抗體。主要用于對病原體的檢測而進(jìn)行傳染病的診斷。

  正式試驗(yàn)時(shí),應(yīng)分別以陽性對照與陰性對照控制試驗(yàn)條件,待檢樣品應(yīng)作一式二份,以保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性。有時(shí)本底較高,說明有非特異性反應(yīng),可采用羊血清、兔血 清或BSA等封閉。


在ELISA中,進(jìn)行各項(xiàng)實(shí)驗(yàn)條件的選擇是很重要的,其中包括:

1、 固相載體的選擇:
許多物質(zhì)可作為固相載體,如聚氯yi 烯、聚苯y(tǒng)i 烯、聚丙酰胺和纖維素等。其形式可以是凹孔平板、試管、珠粒等。目前常用的是40孔聚苯y(tǒng)i 烯凹孔板。不管何種載體,在使用前均可進(jìn)行篩選:用等量抗原包被,在同一實(shí)驗(yàn)條件下進(jìn)行反應(yīng),觀察其顯色反應(yīng)是否均一性,據(jù)此判明其吸附性能是否良好。

2、包被抗體(或抗原)的選擇:
將抗體(或抗原)吸附在固相載體表面時(shí),要求純度要好,吸附時(shí)一般要求PH在9.0~9.6之間。吸附溫度,時(shí)間及其蛋白量也有一定影響,一般多采用4℃18~24小時(shí)。蛋白質(zhì)包被的最適濃度需進(jìn)行滴定:即用不同的蛋白質(zhì)濃度(0.1、1.0和10μg/ml等)進(jìn)行包被后,在其它試驗(yàn)條件相同時(shí),觀察陽性標(biāo)本的OD值。選擇OD值最大而蛋白量最少的濃度。對于多數(shù)蛋白質(zhì)來說通常為1~10μg/ml。

3、 酶標(biāo)記抗體工作濃度的選擇:
首先用直接ELISA法進(jìn)行初步效價(jià)的滴定(見酶標(biāo)記抗體部份)。然后再固定其它條件或采取“方陣法"(包被物、待檢樣品的參考品及酶標(biāo)記抗體分別為不同的稀釋度)在正式實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)里準(zhǔn)確地滴定其工作濃度。

4、 酶的底物及供氫體的選擇:
對供氫體的選擇要求是價(jià)廉、安全、有明顯地顯色反應(yīng),而本身無色。有些供氫體(如OPD等)有潛在的致癌作用,應(yīng)注意防護(hù)。有條件者應(yīng)使用不致癌、靈敏度高的供氫體,如TMB和ABTS是目前較為滿意的供氫體。底物作用一段時(shí)間后,應(yīng)加入強(qiáng)酸或強(qiáng)堿以終止反應(yīng)。通常底物作用時(shí)間,以10-30分鐘為宜。底物使用液必須新鮮配制,尤其是H2O2在臨用前加入。
 


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