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得不到陽性克???可能是忽視了這些細(xì)節(jié)

2020-4-22  閱讀(2063)

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得不到陽性克???可能是忽視了這些細(xì)節(jié)……

過去,提起“分子克隆"或“載體構(gòu)建"這兩個詞,大家可能想到的是傳統(tǒng)“酶切酶連法",即用限制性內(nèi)切酶產(chǎn)生黏性末端,通過堿基互補(bǔ)配對,連接兩個片段的克隆方法。

近年來,“同源重組技術(shù)"逐漸受到科研人員的歡迎,如翊圣Hieff Clone®一步法快速克隆技術(shù)。相比之下,同源重組技術(shù)操作更加簡單,不受到酶切位點(diǎn)的限制,可一次進(jìn)行多個片段的拼接,大大的提高了克隆效率。

雖然同源重組技術(shù)操作簡單,但畢竟實(shí)驗(yàn)過程是環(huán)環(huán)相扣的,一旦某個細(xì)節(jié)處理不好,都可能導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)失敗。為此,小編精心整理了同源重組實(shí)驗(yàn)的常見問題,并給出了可能的原因和解決方案。希望新手們在遇到類似問題時可快速判斷可能的原因,節(jié)省時間,更順利的完成實(shí)驗(yàn)。

常見問題分類:

無克隆。

假陽性。

菌落PCR無條帶。

酶切鑒定多條帶。


無克隆

出現(xiàn)無克隆的現(xiàn)象,可能的原因主要是連接不成功或連接成功,但轉(zhuǎn)化失敗。具體原因分別如下:

1、 連接不成功。

可能原因

解決方法

1)引物設(shè)計(jì)錯誤。

1)設(shè)計(jì)原則:同源臂(15-25 bp,GC含量40-60%)+酶切位點(diǎn)(根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求保留或刪除)+基因特異性引物。

2)判斷方法:可用翊圣無縫克隆引物設(shè)計(jì)軟件核對,鏈接:h、t、t、p :122.112.245.84:8080/hieff-clone/

2)載體與目的片段使用比例失調(diào)。

1)載體和目的片段濃度測定方法:常用吸光度法或瓊脂糖電泳法。

2)載體與目的片段添加比例:

單片段建議:適載體與目的片段摩爾比為1:2-1:3,載體使用量為0.03 pmol;目的片段使用量為0.06-0.09 pmol。

多片段建議:適DNA使用量為每片段(含線性化載體)0.03 pmol。

3)載體與目的片段不純。

1)推薦對線性化載體、PCR產(chǎn)物進(jìn)行膠回收純化。

2)純化產(chǎn)物建議溶解在pH8.0的ddH2O中保存。

3)若為未純化的DNA,加入總體積不超過反應(yīng)體系體積1/5。

4)操作問題或試劑盒失效。

建議做試劑盒附帶的陽性對照實(shí)驗(yàn)。判斷方法:

1)若陽性對照有克隆并檢測為陽性,則排除試劑盒問題。

2)若陽性對照無克隆,可能是操作問題或試劑盒失效,建議換其他人或換試劑盒進(jìn)行陽性對照實(shí)驗(yàn),進(jìn)一步確定問題。

2、 連接成功,但無克隆。

可能原因

解決方法

1)感受態(tài)細(xì)胞效率低,<107 cfu/μg。

建議用轉(zhuǎn)化效率大于107 cfu/μg的感受態(tài)細(xì)胞。

判斷方法:可轉(zhuǎn)化0.1ng質(zhì)粒(如PUC19),觀察克隆數(shù),若生長大于1000個菌斑,則轉(zhuǎn)化效率大于107 cfu/μg。

2)抗生素種類錯誤。

建議將未線性化載體轉(zhuǎn)化涂板。

判斷方法:若未長克隆,則可能是抗性種類錯誤或濃度過高。需檢查質(zhì)粒圖譜確認(rèn)抗性或確認(rèn)適濃度。


假陽性

出現(xiàn)假陽性的情況,主要表現(xiàn)有兩種,克隆不含插入片段或含有錯誤的插入片段。具體原因分別如下:

1、克隆不含插入片段(空載)。

可能原因

解決方法

1)載體線性化不*。

建議將已制備的線性化的載體轉(zhuǎn)化涂板。  

判斷方法:如果長克隆較多,則表示線性化不*。建議優(yōu)化酶切體系。

2)體系中混入了相同抗性的環(huán)狀質(zhì)粒。

1)產(chǎn)生原因:

以反向PCR方式進(jìn)行載體線性化,殘留環(huán)狀質(zhì)粒模板導(dǎo)致。

目的基因PCR模板為與載體相同抗性的環(huán)狀質(zhì)粒,殘留環(huán)狀 質(zhì)粒模板導(dǎo)致。

2)判斷方法:將已制備的線性化載體和目的片段分別轉(zhuǎn)化涂板,如果長克隆較多,則表示有相同抗性的環(huán)狀質(zhì)?;烊?。建議PCR擴(kuò)增產(chǎn)物先用DpnI 消化模板后,再進(jìn)行膠回收純化處理或直接進(jìn)行膠回收純化處理,去除殘留的環(huán)狀模板質(zhì)粒導(dǎo)致的假陽性。

2、克隆含有錯誤的插入片段。

可能原因

解決方法

1)PCR產(chǎn)物混有非特異擴(kuò)增產(chǎn)物。

1)可能情況:PCR擴(kuò)增目的基因時有非特異條帶出現(xiàn),未進(jìn)行膠回收純化。

2)解決方案:

優(yōu)化PCR體系,提高特異性;

膠回收PCR產(chǎn)物;

鑒定更多的克隆。

2)片段缺失。

1)可能情況:載體或片段有多個同源重復(fù)序列。

2)解決方案:借助網(wǎng)站或軟件進(jìn)行序列比對(如NCBI, Vector NTI等)。


菌落PCR無條帶

出現(xiàn)菌落PCR無條帶的現(xiàn)象,可能與PCR擴(kuò)增或重組連接有關(guān),具體原因分別如下:

可能原因

解決方法

1)菌落PCR引物錯誤。

建議用載體的通用引物進(jìn)行菌檢,或至少使用一條通用引物。

2)PCR體系或程序不合適。

1)可能情況:用目的片段引物和載體通用引物擴(kuò)增都無產(chǎn)物。

2)解決方案:

優(yōu)化PCR體系、程序;

提取質(zhì)粒,以質(zhì)粒做模板PCR驗(yàn)證;

換酶切法鑒定克隆。

3)連接失敗。

1)判斷方法:目的引物或一端載體通用引物,另一端目的引物擴(kuò)增無條帶,但載體通用引物擴(kuò)增有條帶,且大小符合空載。

2)可能原因:載體線性化不*。建議優(yōu)化酶切體系。


酶切鑒定多條帶

可能原因

解決方法

重組載體上有多個相同的酶切位點(diǎn)。

1)換其他酶切位點(diǎn)進(jìn)行酶切鑒定;

2)更換克隆鑒定方法,如換成菌落PCR或測序鑒定。


以上同源重組的常見問題您中槍過嗎?若有,快來“對號入座“吧。如果還有其它更多關(guān)于一步法快速克隆的問題,歡迎留言或來電。


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